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As capivaras apresentam hábitos alimentares generalistas, baixa exigência de habitat, e reprodução constante, tais fatores levam a um aumento populacional (Alho et al., 1986; Pinto et al., 2006). O desequilíbrio populacional destes animais leva à riscos na saúde pública, visto que a capivara está relacionada à transmissão de agentes zoonóticos como a febre maculosa (Rickettsia spp., vírus da varíola (Vaccinia virus), doença de chagas (Trypanosoma cruzi) e leishmaniose (Leishmania spp.)(Campos et al, 2019; Dutra, 2015; Ferrer et al., 2021).

Será feita a captura dos animais através de armadilha, após é feita a contenção e sedação, para então realizar a coleta de material biológico (sangue, fezes e carrapatos). Após a coleta, o material armazenado em caixas térmicas será transportado até o Laboratório de Biologia Molecular Veterinária (LabMol-Vet) na Universidade Federal de Pelotas, onde serão realizados testes moleculares como PCR.

● Captura e contenção: A captura será através de armadilha e consiste em um cercado móvel com o uso de ceva com milho e mecanismo de fechamento automático (revisado diariamente), com os animais sendo conduzidos a uma gaiola de contenção, onde serão imobilizados com auxílio de um cambão. A contenção farmacológica se dará através da aplicação de sedativo contendo a combinação de xilazina (0,5 mg/kg) e cetamina (5 mg/kg) via intramuscular.

● Coleta de material biológico: A coleta de sangue será feita em tubo contendo EDTA através de agulha e vacutainer na veia cefálica ou safena. Já a coleta de fezes será realizada manualmente direto da ampola retal e o material armazenado em pote plástico de coleta. Os carrapatos serão retirados através de torção para preservar o aparelho bucal e armazenados em tubo falcon de 50ml.

Metodologia específica: após a obtenção e transporte, será realizado o procedimento das amostras.

● Testes coprológicos: As amostras fecais serão submetidas a duas técnicas coprológicas para a pesquisa de parasitos, sendo elas de Sedimentação (Hoffmann, Pons e Janer) e Flutuação (Willis-Mollay).
● Identificação dos carrapatos: A identificação dos carrapatos será realizada através de observação com o auxílio de lupa e chaves de identificação encontradas em bibliografia estabelecida (Andreotti et al., 2016; Barros-Batesti, 2024). Posterior à identificação, os carrapatos serão submetidos à técnicas moleculares.
● Extração de DNA: Todas as amostras biológicas serão utilizadas para extração de DNA. O protocolo de extração a ser utilizado será com Quickzol - Trizol Reagente (Ludwig Biotecnologia) conforme instruções do fabricante.
● Reações de PCR: Nas reações de PCR, o mix será constituído de reagentes da empresa Ludwig Biotecnologia (Tampão, dNTP, MgCl2, Taq Polimerase) sendo as reações padronizadas conforme instruções do fabricante e também para cada agente de acordo com literatura prévia.
○ Rickettsia spp: Para a detecção desta bactéria, serão utilizados dois primers para diferentes genes, sendo CS78 e CS323 para o gene gltA, e Rr190.70p e Rr190.602n para o gene ompA. As condições da PCR vão de acordo com Labruna et al. (2004).
○ Trypanosoma sp.: Para Trypanosoma o par de primers a ser utilizado será o 121 e 122 direcionados ao kDNA, conforme descrito por Schijman et al. (2011).
○ Leishmania spp: Para detecção de Leishmania serão utilizados primers para a região ribossomal ITS1 de acordo com El Tai et al. (2000).

Com o presente trabalho espera-se elucidar o conhecimento acerca das doenças que acometem as capivaras (Hydrochaeris hydrochaeris) bem como seu impacto na saúde pública.