Portal InstitucionalUFPEL

Diante da importância dos compostos bioativos e de sua atividade antioxidante para a saúde, assim como da biodiversidade, é relevante pesquisas que considerem as diferenças físicas, químicas e bioquímicas de óleos oriundos de diferentes espécies vegetais.
A exemplo podemos citar a pesquisa desenvolvida por Leal et al. (2021), em que descreveram o potencial anti-SARS-CoV-2 de uma planta medicinal brasileira, tradicionalmente usada para tratar infecções respiratórias. Os pesquisadores investigaram as propriedades de compostos presentes nos extratos da espécie Siparuna cristata, de origem amazônica, indicando dois flavonoides (kumatakenina e a retusina) que demonstraram uma promissora capacidade de inibir a replicação in vitro do coronavírus, responsável pela pandemia que se disseminou no ano de 2020 e que vem causando inúmeros prejuízos para milhares de pessoas até o presente momento.
Entretanto dados referentes a composição química e aplicação tecnológica destes óleos são escassos, tornando necessárias pesquisas científicas sobre o assunto. Dessa forma, o conhecimento destas plantas abre perspectivas para a criação de novos produtos e tecnologias, já que são pouco conhecidas
quimicamente (PADILHA et al., 2017; SANTOS et al., 2020; SILVA et al., 2016).

Para realizar o estudo, amostras de diferentes espécies vegetais serão coletadas em ambientes naturais. Os óleos fixos serão extraídos das partes selecionadas das plantas utilizando métodos adequados, como permitido por solvente ou prensagem a frio. A capacidade antioxidante dos óleos será avaliada por meio de ensaios específicos, como a autoridade da atividade captadora de radicais livres ou a capacidade de acompanhamento da apresentação lipídica. A identificação e quantificação dos compostos bioativos presentes nos óleos serão realizados por técnicas analíticas, como cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC) ou espectrometria de massa.

Reagentes utilizados: Álcool etílico P.A.; Álcool metílico P.A.; Álcool butílico P.A.; Álcool Acetona P.A.; Hexano P.A.; Ácido clorídrico P.A. (PM = 36,5; d = 1,19); DPPH (2,2-Diphenyl-1-picryl-hidrazil) (PM = 394,3) - Sigma, código 095K1452, ou equivalente; Reagente fenol Folin-Ciocalteu; Carbonato de sódio P.A.; BDA (ágar-batata-dextrose); Ágar Brain Heart Infusion (BHI, Acumedia®); Ágar Sabouraud dextrose; Acetato de sódio trihidratado (PM = 136,08); Ácido acético glacial P.A.; Cloreto férrico hexahidratado (PM = 270,3); Sulfato ferroso heptahidratado (PM = 278,02); TPTZ (2,4,6-Tris(2-piridil)-s-triazina) (PM = 312,34) - Sigma, código T1253 ou equivalente; ABTS (2,2 AZINO BIS (3-ethylbenzo thiazoline 6 sulfonic acid) diammoninum salt (PM = 548,68) - Sigma, código A1888 ou equivalente; Persulfato de Potássio (PM = 270,3) Acros Organics, código 202015000 ou equivalente; Trolox (6-Hidroxi-2,5,7,8-tetrametilchroman-2-ácido carboxílico) (PM = 250,29) - Sigma, código 218940050, ou equivalente; Hidróxido de sódio P.A.; Ácido sulfúrico P.A.; Aceto-orcein; Sulfato de sódio anidro P.A.; Dimetilsulfóxido ou sulfóxido de dimetilo; Polimixina B; Fluconazol; Resazurina a 0,02% (Sigma-Aldrich®); Clorofórmio ou triclorometano; Cloreto de ferro P.A.; Magnésio granulado; Hidróxido de amônio P.A.; Sephadex G-25 Superfine; Éter etílico P.A.; 2-Mercaptoethanol (99%)Sigma-Aldrich; HCL-Butanol; Solução tampão acetato de sódio 2M; Sulfato de Cobre (ICO) 5H2O P.A.; Violeta de pirocatecol P.A..

Equipamentos utilizados: Agitador de tubos de ensaio; Balança analítica; Balão volumétrico de 10 mL, 50mL e 1.000 mL; Cronômetro digital; Cubetas de vidro (4 x 1 cm); Espectrofotômetro; Pipeta automática (10 µL 1.000 µL); Proveta de 50 mL; Tubos de ensaio com tampa rosqueada (8 mL); Banho-maria; Estufa de secagem; Capela para exaustão de gases; Autoclave; Incubadora B.O.D.; Placas de petri; Frascos de vidro; Pinças; Espátulas; Pipetas de vidro; Bureta; Bastão de vidro, Erlenmeyer; Manta aquecedora com agitação (1800 RPM temperatura 300°C); Extratores soxhlet; Clevenger; Cadinhos de porcelana; Destilador de vidro; Bomba de vácuo; Kitassato; Moinho de facas; Cromatógrafo; Liofilizador de bancada; Mufla; Peagâmetro de bancada digital; Osmometro de pressão de vapor; Centrifuga; Condutivímetro; Microscópio óptico; Rota evaporador; Funil de vidro liso; Filtro de papel; Funil de Buchner para filtração; Microplaca para microtulação elisa estéril (96 cavidades); Ultra freezer até -90ºC; Agitador magnético com aquecimento; Tubos falcon; Microtubos falcon; Agitador vórtex; Luva nitrílica; Luvas Kevlar para altas temperaturas; Luvas de látex; Papel toalha; Grau e pistilo; Destilador de água tipo Pilsen; Pissetas; Condensadores de vidro tipo Liebig (Reto), Allihn (Bola) e Graham (Serpentina); Balões de vidro com fundo redondo 3 bocas 1000 ml; Balões de vidro fundo chato de 50 ml, 100 ml, 500 ml e 1000 ml.

Resultados esperados: Espera-se que os óleos e extratos apresentem capacidade antioxidante significativa devido à presença de compostos bioativos, como fenóis, flavonoides e copos de gorduras poli-insaturados. Esses compostos têm sido associados a efeitos benéficos à saúde humana, como proteção contra danos oxidativos e prevenção de doenças relacionadas ao estresse oxidativo. Além disso, esse material pode apresentar atividade antimicrobiana, o que sugere seu potencial uso como agentes terapêuticos no combate a infecções causadas por microrganismos patogênicos. Os extratos e óleos provenientes de plantas representam uma fonte rica de compostos bioativos com capacidade antioxidante e atividade antimicrobiana. Essas propriedades podem contribuir para seu potencial uso como ingredientes em produtos alimentícios, cosméticos ou medicamentos naturais. Os resultados dessa pesquisa poderão fornecer atributos científicos para o desenvolvimento de novos produtos à base de plantas, bem como, contribuir para a preservação dessas plantas como recursos naturais naturais.